ISSN 2073–4034
eISSN 2414–9128

Etiopathogenetic mechanisms of uterine fibroids development

Ponomarenko M.S., Reshetnikov E.A., Ponomarenko I.V., Churnosov M.I.

Belgorod State National Research University, Belgorod, Russia

Uterine fibroids are the most common benign tumors in women. However, despite the high incidence of uterine fibroids among reproductive-aged women, its negative impact on a woman’s quality of life, and health care costs for the treatment of patients with uterine tumors, there is currently no unified understanding of the etiopathogenesis of this disease. The modern data on the causes and mechanisms of uterine fibroids development are considered in the article. Uterine fibroids have a complex, multifactorial nature. Genetic, epigenetic factors, dysregulation of key signaling pathways involved in cell proliferation, apoptosis, extracellular matrix proliferation, as well as reactions to steroid hormones play an important role in the development and growth of myoma nodes.
Conclusion: Modern views on the etiopathogenesis of uterine fibroids indicate that this disease has a complex, multifactorial nature. The development of this disease involves genetic and epigenetic mechanisms, reactions to steroid hormones, dysregulation of key signaling pathways, etc. However, in spite of significant progress in understanding of uterine fibroids pathophysiology, today there are still more questions than answers.

Authors’ contributions: Ponomarenko M.S. – search and analysis of literature, summarizing the data, writing the text of the article; Ponomarenko I.V. – editing the text of the article; Reshetnikov E.A. – development of the concept and outline of the article; Churnosov M.I. – reviewing, final editing of the article.
Conflicts of interest: Authors declare lack of the possible conflicts of interests.
Funding: The study was conducted without sponsorship.
For citation: Ponomarenko M.S., Reshetnikov E.A., Ponomarenko I.V., Churnosov M.I. Etiopathogenetic mechanisms of uterine fibroids development.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2024; (1): 34-41 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.241

Keywords

uterine fibroids
etiology
pathogenesis

Миома матки является наиболее распространенной опухолью малого таза, поражающей около 70% женщин во всем мире [1]. Заболевание клинически проявляется только у 30% женщин репродуктивного возраста [2]. Опухоль проявляется выраженными менструальными кровотечениями, часто приводящими к тяжелой железодефицитной анемии, болями в области таза, нарушениями репродуктивной функции, включая бесплодие и осложнения беременности [1, 3]. Миома матки является основной причиной гистерэктомий, на долю которых приходится по меньшей мере одна треть от всех гистерэктомий [4].

Высокая распространенность миомы матки оказывает выраженное экономическое влияние на здраво­охранение во всем мире. По данным литературы, затраты, связанные с лечением миомы матки, составляют ежегодно в США до 34,4 млрд долларов, в Германии – 348 млн долларов, во Франции – 120 млн долларов и 86 млн долларов в Англии [5]. Следует отметить, что расходы на лечение женщин, имеющих миому матки, превышают затраты на лечение женщин с такими распространенными опухолями, как рак молочной железы и рак яичников [5]. Дополнительно к прямым расходам здравоохранения, косвенные затраты вследствие временной нетрудоспособности и инвалидности женщин с миомой матки оцениваются в мире в 1,6–17,2 млрд долларов ежегодно [6].

На сегодняшний день этиологические факторы и патогенетические механизмы развития миомы матки (рисунок) в значительной степени остаются загадкой. Согласно данным литературы, генетические, эпигенетические факторы, нарушения регуляции ключевых сигнальных путей, участвующих в клеточной пролиферации, апоптозе, разрастании внеклеточного матрикса, а также реакции на стероидные гормоны, играют важную роль в формировании и росте миоматозных узлов [1–3, 7–9].

35-1.jpg (119 KB)

Модель этиопатогенеза миомы матки включает генетическую трансформацию единственной стволовой клетки миометрия в клетку, инициирующую опухоль, которая под влиянием эндокринных, аутокринных, паракринных факторов роста и сигнализации гормональных рецепторов «включается» в процесс клонального роста опухоли [10].

Миома матки характеризуется разнообразными хромосомными аномалиями, которые регистрируются у 40% женщин с данным заболеванием, и высокой гетерогенностью соматических мутаций [3, 7, 8]. К основным цитогенетическим изменениям в миома­тозных узлах можно отнести трисомию по 12 хромосоме, транслокацию (t12; t14) (12q14–q15; 12q23–q24), делеции в 7 хромосоме (7q22–q32), локусах 3q и 1p, а также хромосомные перестройки в локусах 6p21, 10q22 и 13q21–q22 и хромотрипсис [3, 11].

Важное значение в этиопатогенезе заболевания имеют мутации ряда генов [12]. Наиболее частыми соматическими мутациями при миоме матки являются мутации в генах MED12, HMGA2 и FH [12]. В результате секвенирования 2 экзона гена MED12 показано, что до 90% миом матки содержат специфические мутации в субъединице 12 медиаторного комплекса [1]. Важно отметить, что этот показатель значительно варьирует в зависимости от этнической принадлежности пациенток [13]. В метаанализе, выполненном He C. et. al. (2022), установлено, что мутации в MED12 чаще наблюдались у афроамериканских женщин (74,5%) по сравнению с европе­оидными (65,8%) и азиатскими (53,2%) пациентками с миомой матки [13]. Также в литературе имеются исследования, посвященные анализу корреляций мутаций в MED12 с размерами миоматозных узлов и их количеством. Выявлено, что мутации в MED12 чаще регистрируются при множественных миоматозных узлах с небольшой митотической активностью, субсерозной локализации и с высоким содержанием внеклеточного матрикса [13–15].

MED12 представляет собой часть медиатора мультипротеинового комплекса, который является эволюционно сохраненным регулятором транскрипции, опосредуемой РНК-полимеразой II [15]. Ген MED12 расположен в Х-хромосоме и находится в высококонсервативном участке генома. Мутации в MED12 приводят к отсоединению циклина С и CDK8/19 от основного медиатора, потере активности CDK-киназы и формированию в результате этого «уникального» паттерна экспрессии ряда генов (Axin2, cyclin D1, Myc и Wnt), вовлеченных в процессы клеточного цикла [14, 16]. Наряду с миомой матки мутации в MED12 также связаны с другими гормонозависимыми опухолями женского организма, такими как фиброаденома и филлодные опухоли молочных желез [17], аденомиома матки [18].

Другой распространенной мутацией при миоме матки является мутация в гене HMGA2, которая наблюдается примерно в 10% случаев заболевания [14]. Ген HMGA2 локализуется в 12-й хромосоме человека (q14.3) и кодирует один из представителей группы белков с высокой мобильностью. HMGA2 – хроматин-связывающий негистоновый белок, который обычно экспрессируется только в недифференцированной мезенхимальной ткани, играет важную роль в пролиферации, дифференцировке клеток и апоптозе [19, 20]. Согласно данным литературы, высокая экспрессия гена HMGA2 регистрируется только во время эмбриогенеза и снижается до необнаруживаемых уровней в тканях взрослого организма [15, 19]. Наряду с этим имеются отдельные данные о «возобновлении» экспрессии гена HMGA2 в дифференцированных тканях, которая вызывает мезенхимальный онкогенез. В основе этого «возобновления» экспрессии гена HMGA2 может лежать хромосомная перестройка в области 12q15 в клетках миометрия [21]. Исследования как in vitro, так и in vivo показали, что сверхэкспрессия HMGA2 способствует повышенной продукции факторов ангиогенеза как в нормальных клетках миометрия, так и в клетках опухоли [20]. Гену HMGA2 принадлежит одна из ключевых ролей в регуляции ангиогенеза, сверхэкспрессия этого гена коррелирует с повышенной плотностью сосудистой сети, что является важным фактором в развитии опухоли [19, 20].

Итак, мутации в генах MED12 и HMGA2 наблюдаются примерно в 80–90% миом матки, но следует отметить, что данные мутации, как правило, являются взаимоисключающими (присутствует в опухоли только одна какая-либо из этих 2 мутаций) [10], а также характеризуются разнонаправленными эффектами по отношению к опухоли: у женщин с мутацией в гене HMGA2 наблюдаются более крупные миоматозные узлы в отличие от женщин, имеющих мутацию в гене MED12, для которых характерны множественные миоматозные узлы меньшего размера [19]. Вместе с этим в исследовании, выполненном Galindo L.J. et al., показано, что в 50% опухолей одновременно наблюдались как мутации в MED12, так и сверхэкспрессия мРНК HMGA2, что позволило авторам предположить, что совместные изменения в обоих генах достаточно часты при миоме матки [22].

Третья по частоте встречаемости соматическая мутация при миоме матки – мутация в гене FH, которая составляет 1–2% случаев [1]. Данный ген, расположенный в 1-й хромосоме человека (q42.3–q43), кодирует фермент фумаратгидратазу, которая в цикле трикарбоновых кислот катализирует превращение фумарата в L-малат, участвующий в энергетическом метаболизме клетки [23]. Клетки с дефицитом фермента фумаратгидратазы теряют способность метаболизировать фумарат, и, следовательно, повышается его внутриклеточный уровень, что приводит к серии метаболических нарушений [24]. Так, в митохондриях снижается окислительное фосфорилирование, активируются аэробный гликолиз, катаболизм глютамина и основные анаболические пути белков HIF-1α и HIF-2α, которые способны индуцировать транскрипцию ключевых генов, участвующих в ангиогенезе и росте клеток [25]. Кроме того, нарушается репарация ДНК за счет изменения метилирования гистонов [23]. Еще одним онкогенным эффектом дефицита фермента фумаратгидратазы является стимулирование перехода эпителия в мезенхиму посредством подавления экспрессии микроРНК семейства miR-200 [26].

Интересным представляется тот факт, что миомы матки с мутацией FH имеют специфические гистоморфологические признаки, которые включают ядерную атипию симпластического типа, отек альвеолярного рисунка, а также заметные эозинофильные ядрышки, окруженные перинуклеолярными ореолами и эозинофильными цитоплазматическими включениями [27]. Следует отметить, что миомы матки с дефицитом фермента фумаратгидратазы не связаны с повышенным риском злокачественности [28], однако они могут характеризоваться ранним началом и множественными миоматозными узлами [29]. Важно отметить, что гетерозиготные мутации в гене FH, возникшие в зародышевой клеточной линии, приводят к развитию аутосомно-доминантного онкологического синдрома, известного как наследственный лейомиоматоз и почечно-клеточный рак (HLRCC) [28].

Наряду с хромосомными перестройками и соматическими мутациями, развитие заболевания в значительной степени зависит от полиморфизма ряда генов-кандидатов, в том числе генов половых гормонов, их рецепторов, цитокинов, факторов роста, апоптоза и др. [3]. На сегодняшний день выполнено 19 полногеномных исследований (GWAS) ассоциаций однонуклеотидных полиморф­ных локусов с развитием матки [https://www.ebi.ac.uk/gwas/search?query=uterine%20fibroids], а также большое количество ассоциативных исследований, направленных на изучение вовлеченности отдельных полиморфных маркеров, а также межгенных взаимодействий в формирование данного заболевания. В результате этих исследований имеются данные с риском развития заболевания более 20 GWAS-значимых локусов [https://www.ebi.ac.uk/gwas/search?query=uterine%20fibroids] и свыше 100 полиморфизмов, показавших свою вовлеченность в развитие заболевания в других ассоциативных исследованиях [3, 30, 31]. При этом результаты исследований нередко неоднозначны, что обусловлено как меж­этническими генетическими различиями пациенток с миомой матки, так и многофакторной природой данного заболевания и обусловленными этим различиями в характере генно-средовых взаимодействий в различных исследуемых этно-территориальных группах населения, имеющих свои особенности как в генетической «конституции», так и в средовых факторах риска развития заболевания (их перечень, встречаемость и степень выраженности).

Важная роль в формировании и прогрессировании миомы матки принадлежит эпигенетическим факторам, влияющим на экспрессию генов, вовлеченных в патогенез данного заболевания [7, 8]. Основные эпигенетические механизмы включают метилирование ДНК, модификацию гистонов, микро-РНК (miRNAs) и длинные некодирующие РНК (lncRNAs). Метилирование ДНК является общим механизмом программирования клеток как при нормальном росте ткани, так и при развитии опухоли посредством изменения нормального профиля экспрессии мРНК в клетках миометрия [32]. В литературе имеется информация о примерно 120 генах, уровень метилирования которых (гипо- и гиперметилирование) изменен при миоме матки [14].

Микро-РНК играют значимую роль в эпигенетическом контроле экспрессии генов в различных органах, включая матку [33–35]. Недавние исследования, посвященные изучению роли miRNAs в патофизиологии миомы матки, показали, что miRNAs действуют как опухолевые супрессоры и антиапоптотические медиаторы (семейство let-7, кластер miR-17-92, miR-372-373, miR-155-BIC, miR 15/16, miR-20, miR-21, miR-26a), а также играют роль в дифференцировке, пролиферации (семейство let-7, miR-181b, miR-21), воспалении (miR-125, miR-155) и ремоделировании внеклеточного матрикса (miR-21, miR-192, miR-206, miR-1, miR-133a) [35, 36]. Таким образом, miRNAs являются важнейшими регуляторами клеточных процессов в организме при миоме матки, таких как клеточная пролиферация, апоптоз, ремоделирование внеклеточного матрикса, ангиогенез и воспаление [34, 36].

В клетках миоматозных узлов зарегистрированы изменения в экспрессии значительного числа генов lncRNAs (HOTTIP, H19, CAR10, APTR, TCONS_l2_00000923, CASC15, UC.10, XIST, LINC00890, LNCRNA-ATB, HULC, MEG3, BX640708, TSIX, UCA1, AK023096, MAMDC2AS1) в сравнении с нормальными клетками миометрия [37]. Следует отметить, что lncRNA H19 является регулятором экспрессии генов, связанных с пролиферацией, воспалением – HMGA2, MED12 (ключевые для миомы матки), TET3 и генов, ремоделирующих внеклеточный матрикс [38]. lncRNA генов APTR и XIST участвуют в гормонозависимой пролиферации клеток миомы матки, активации сигнального пути WNT и экспрессии генов COL1A1, COL3A1 и FN1 [39, 40].

Половые гормоны играют ключевую роль в регуляции роста миомы матки [41]. Однако, несмотря на большое количество исследований, посвященных изучению роли половых гормонов, в частности эстрогенов и прогестерона, в патофизиологии данного заболевания молекулярные механизмы, с помощью которых эстрогены и прогестерон способствуют развитию миомы матки, в значительной степени неизвестны [8, 42]. Миома матки считается эстроген-зависимой опухолью, основываясь на ее связи с репродуктивным возрастом женщины – отсутствие опухоли матки до менархе и низкая частота встречаемости миоматозных узлов после менопаузы [43]. Кроме того, следует отметить, что для клеток опухоли характерна сверхэкспрессия рецепторов эстрогенов, а также фермента ароматазы, катализирующей превращение андрогенов в эстрогены по сравнению с клетками миометрия [43]. Однако следует отметить, что уровень эстрогенов в сыворотке крови у женщин с миомой и без нее не имеют статистически значимых различий [43]. Кроме того, для подтверждения важной роли стероидных гормонов яичников в патогенезе опухоли служат данные исследований, показывающих замедление роста миоматозных узлов при непрерывном лечении агонистами гонадотропин-рилизинг-гормона (ГнРГ) женщин в течение 3 месяцев [41, 44]. Это обусловлено уменьшением выброса эстрогенов и прогестерона в ответ на снижение активности рецептора ГнРГ в гипофизе.

Биосинтез эстрогенов происходит в яичниках под действием лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов, которые регулируются ГнРГ [45]. Эстрогены опосредуют свои биологические эффекты на клетки-мишени несколькими путями, которые можно классифицировать как геномные и негеномные. Геномные пути зависят от модуляции транскрипционной активности генов. Комплексы эстроген – эстрогеновый рецептор могут как «напрямую» связываться с регуляторными областями «генов-мишеней» и оказывать влияние на их экспрессию, так и взаимодействовать с определенным ДНК-связывающим транскрипционным фактором (специфичный белок 1, ядерный фактор kB, CCAAT/энхансер-связывающий белок β, GATA-связывающий белок 1) [1, 43]. Конечным результатом этого является активация или подавление экспрессии целевого ряда генов, кодирующих факторы роста, белки внеклеточного матрикса и другие в «чувствительных» к эстрогенам тканях [46]. Негеномные пути, как правило, реализуются через активацию различных сигнальных каскадов (Ras–Raf–MEK–MAPK, PI3K/Akt, PLC/PKC, cAMP/PKA, Wnt/β-катенин), которые, в свою очередь, косвенно могут модулировать экспрессию определенных генов [1, 43].

Обращает на себя внимание тот факт, что рост миоматозных узлов стимулируют не только «естественные» эстрогены, образующиеся в яичниках, но и эстрогены, которые формируются за счет локального превращения андрогенов внутри самих опухолей [3, 43]. Так, тестостерон и андростендион превращаются в эстрадиол в опухолевых клетках (ферменты – ароматаза и 17β-гидроксистероиддегидрогеназа), что приводит к локальной гиперэстрогении в области миомы матки [3, 43].

Эффекты эстрогенов в организме напрямую зависят от содержания их свободных форм. При этом важная роль отводится глобулину, связывающему половые гормоны (SHBG) [47]. По данным литературы, около 38% эстрогенов связывается с SHBG, 60% – с альбумином и только 2% являются свободными, и именно эти эстрогены проявляют биологическую активность в организме женщины [48]. Таким образом, SHBG регулирует концентрацию биологически активных эстрогенов в крови, влияя на их биодоступность [47, 49]. При этом следует отметить, что, несмотря на очевидную патогенетическую значимость SHBG для миомы матки, работы, посвященные изучению связи SHBG с заболеванием, отсутствуют, хотя очевидно, что SHBG, детерминируя в значительной степени уровень свободных эстрогенов, будет таким образом и существенно влиять на фенотипические эффекты эстрогенов в организме и, в том числе, при формировании миомы матки. В литературе указывается, что одним из значимых факторов развития заболевания у женщин, имеющих ожирение, является сниженная продукция SHBG, что приводит к повышению уровня несвязанных циркулирующих эстрогенов, являющихся фактором риска для миомы матки [50].

По данным литературы, эстрогены в клетках опухоли вызывают увеличение экспрессии рецепторов прогестерона, что делает миому матки более «чувствительной» к сигналам данного гормона [8]. На животных моделях показано, что уровень экспрессии рецепторов прогестерона в миоматозных узлах выше по сравнению с рецепторами эстрогенов [51]. В исследовании, выполненном Khan K.N. et al. выявлено, что у женщин с миомой матки, не получавших терапию агонистами ГнРГ, содержание рецепторов прогестерона было значительно выше, чем рецепторов эстрогенов [44]. Однако в литературе есть и противоположные данные, демонстрирующие преобладание эстрогеновых рецепторов в опухоли [43]. Обращает на себя внимание, что митотическая активность в миоматозных клетках выше во время секреторной фазы менструального цикла (когда доминирует прогестерон), чем во время пролиферативной фазы (когда доминируют эстрогены) [52]. Таким образом, прогестерону отводится важная роль в патофизиологии миомы матки [8]. Данный гормон стимулирует пролиферацию, способствуя аномальному разрастанию внеклеточного матрикса, и, таким образом, индуцирует рост опухоли [8]. Следует отметить, что регуляция роста миомы матки, опосредованная прогестероном, происходит не только за счет повышенной пролиферации, но и за счет снижения апоптоза через индукцию экспрессии белка B-клеточной лимфомы-2 (Bcl-2) [2]. Свои биологические эффекты прогестерон реализует двумя путями, которые можно классифицировать как геномные и негеномные. Геномный механизм заключается в том, что комплекс прогестерона и рецептора прогестерона самостоятельно или через факторы транскрипции взаимодействует с ДНК и регулирует экспрессию генов-мишеней, в частности ядерного антигена пролиферирующих клеток (PCNA), эпидермального фактора роста (EGF), трансформирующего фактора роста бета (TGF-β), антиапоптотического белка (Bcl-2) [42]. Согласно негеномному пути, комплекс прогестерона и рецептора прогестерона активирует множество быстрых сигнальных путей в клетках, вовлеченных в патофизиологию миомы матки [42].

Значимую роль в патогенезе миомы матки играют гормоны передней (лютеинизирующий гормон) и задней (пролактин) долей гипофиза [4, 53]. Согласно результатам исследования, выполненного Baird D.D. et al., у женщин с более высоким уровнем лютеинизирующего гормона вероятность развития миомы матки была значительно выше [54]. Литературные данные свидетельствуют о том, что пролактин – гормон, ответственный за лактацию, присутствует и функционирует в миоматозных клетках [55]. Пролактин активирует передачу сигналов STAT5 и MAPK в клеточных линиях миометрия крысы и человека и, таким образом, участвует в регуляции развития/роста опухоли матки. Кроме того, данный гормон стимулирует экспрессию маркеров миофибробластов в клетках миометрия крысы [55].

Негормональными регуляторами развития миомы матки являются факторы роста и провоспалительные цитокины, которые «отвечают» за многочисленные аспекты клеточного цикла, включая пролиферацию, миграцию и дифференцировку [56, 57]. Трансформирующий фактор роста β (TGF-β) считается одним из наиболее значимых факторов роста и имеет ключевое значение в патогенезе ряда заболеваний, ассоциированных с фиброзом, в том числе и миомы матки [58]. Его концентрация в опухоли матки в 3–5 раз выше, чем в нормальном миометрии [58]. По данным литературы, аномальное разрастание внеклеточного матрикса при миоме матки связано с активацией сигнальных путей TGF-β [59]. В нормальных гладкомышечных клетках TGF-β действует как мощный опухолевый супрессор посредством ингибирования роста и стимуляции апоптоза. А в клетках опухоли матки, для которых характерна избыточная экспрессия TGF-β, он является индуктором роста миоматозного узла [60].

Цитокины играют важную роль во многих биологических процессах организма, включая онкогенез. Цитокины стимулируют пролиферацию клеток опухоли, регулируют ангиогенез и апоптоз, участвуют в формировании внеклеточного матрикса [61, 62]. Установлено, что ключевые провоспалительные цитокины, такие как фактор некроза опухоли (TNF)-α, интерлейкин (IL)-1β, интерферон (INF)-γ и NF-κB сверхэкспрессируются в клетках миомы матки по сравнению с нормальными клетками миометрия [63]. Кроме того, в литературе есть данные о том, что уровень TNF-α в сыворотке крови у женщин с клиническими симптомами миомы матки достоверно выше, чем в группе здоровых женщин [64]. Следует отметить, что TNFα является мощным стимулятором активности фермента ароматазы и за счет этого способствует локальной гиперэстрогении [64].

Интересные данные представлены в работе K V.K. et al., где указывается, что микробиота кишечника играет значимую роль в патогенезе миомы матки [65]. Предполагается, что дисбактериоз кишечника, характеризующийся изменением его микробиома, запускает следующие пути, важные для патофизиологии миомы матки: 1) нарушается функционирование микробиом-зависимого «эстроболома» (группа бактерий, включающая Eubacterium lentum, Bacteroides sp., Bifidobacterium sp., Streptococcus sp. и др., которые могут метаболизировать эстрогены), что приводит к гиперэстрогении, являющейся известным фактором риска развития миомы матки; 2) изменяются уровни кишечных метаболитов (короткоцепочечные жирные кислоты), что вызывает различные иммунные нарушения и, тем самым, индуцирует воспаление (потенцирует развитие гиперэстрогении) [65].

Заключение

Таким образом, современные представления об этиопатогенезе миомы матки свидетельствуют о том, что данное заболевание имеет сложную, многофакторную природу, в развитии которого задействованы генетические и эпигенетические механизмы, реакции на стероидные гормоны, нарушения регуляции ключевых сигнальных путей и др. Однако, несмотря на существенный прогресс в понимании патофизиологии миомы матки, на сегодняшний день остается больше вопросов, чем ответов.

References

  1. Yang Q., Ciebiera M., Bariani M.V., Ali M., Elkafas H., Boyer T.G., Al-Hendy A. Comprehensive review of uterine fibroids: developmental origin, pathogenesis, and treatment. Endocr. Rev. 2022;43(4):678-719. https://dx.doi.org/10.1210/endrev/bnab039.
  2. Ali M., Ciebiera M., Vafaei S., Alkhrait S., Chen H.-Yu., Chiang Yi-F. et al. Progesterone signaling and uterine fibroid pathogenesis; molecular mechanisms and potential therapeutics. Cells. 2023;12(8):1117. https://dx.doi.org/10.3390/cells12081117.
  3. Koltsova A.S., Efimova O.A., Pendina A.A. A view on uterine leiomyoma genesis through the prism of genetic, epigenetic and cellular heterogeneity. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(6):5752. https://dx.doi.org/10.3390/ijms24065752.
  4. Stewart E.A., Nowak R.A. Uterine fibroids: hiding in plain sight. Physiology (Bethesda). 2022;37(1):16-27. https://dx.doi.org/10.1152/physiol.00013.2021.
  5. Lou Z., Huang Y., Li S., Luo Z., Li C., Chu K. et al. Global, regional, and national time trends in incidence, prevalence, years lived with disability for uterine fibroids, 1990-2019: an age-period-cohort analysis for the global burden of disease 2019 study. BMC Public Health. 2023;23(1):916. https://dx.doi:10.1186/s12889-023-15765-x.
  6. Shih V., Banks E., Bonine N.G., Harrington A., Stafkey-Mailey D., Yue B. et al. Healthcare resource utilization and costs among women diagnosed with uterine fibroids compared to women without uterine fibroids. Curr. Med. Res. Opin. 2019;35(11):1925-35. https://dx.doi.org/10.1080/03007995.2019.1642186.
  7. Baranov V.S., Osinovskaya N.S., Yarmolinskaya M.I. Pathogenomics of uterine fibroids development. Int. J. Mol. Sci. 2019;20(24):6151.https://dx.doi.org/10.3390/ijms20246151.
  8. Machado-Lopez A., Simón C., Mas A. Molecular and cellular insights into the development of uterine fibroids. Int. J. Mol. Sci. 2021;22(16):8483. https://dx.doi.org/10.3390/ijms22168483.
  9. Пономаренко И.В., Чурносов М.И. Современные представления об этиопатогенезе и факторах риска лейомиомы матки. Акушерство и гинекология. 2018;8:27-32. [Ponomarenko I.V., Churnosov M.I. Current views on the etiopathogenesis and risk factors of uterine leiomyoma. Obstetrics and Gynecology. 2018;(8):27-32. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.8.27-32.
  10. Salas A., Beltrán-Flores S., Évora C., Reyes R., Montes de Oca F., Delgado A., Almeida T.A. Stem cell growth and differentiation in organ culture: new insights for uterine fibroid treatment. Biomedicines. 2022;10(7):1542.https://dx.doi.org/10.3390/biomedicines10071542.
  11. Sefah N., Ndebele S., Prince L., Korasare E., Agbleke M., Nkansah A. et al. Uterine fibroids - causes, impact, treatment, and lens to the African perspective. Front. Pharmacol. 2023;13:1045783. https://dx.doi.org/10.3389/fphar.2022.1045783.
  12. Buyukcelebi K., Chen X., Abdula F., Duval A., Ozturk H., Seker-Polat F. et al. Engineered MED12 mutations drive uterine fibroid-like transcriptional and metabolic programs by altering the 3D genome compartmentalization. Res. Sq. [Preprint]. 2023;rs.3.rs-2537075. https://dx.doi.org/10.21203/rs.3.rs-2537075/v1.
  13. He Ch., Nelson W., Li H., Xu Y.-D., Dai X.-J., Wang Y.-X. et al. Frequency of MED12 mutation in relation to tumor and patient's clinical characteristics: a meta-analysis. Reprod. Sci. 2022;9(2):357-65. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-021-00473-x.
  14. Äyräväinen A., Pasanen A., Ahvenainen T., Heikkinen T., Pakarinen P., Härkki P., Vahteristo P. Systematic molecular and clinical analysis of uterine leiomyomas from fertile-aged women undergoing myomectomy. Hum. Reprod. 2020;35(10):2237-44. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deaa187.
  15. Maekawa R., Sato S., Tamehisa T., Sakai T., Kajimura T., Sueoka K., Sugino N. Different DNA methylome, transcriptome and histological features in uterine fibroids with and without MED12 mutations. Sci. Rep. 2022;12(1):8912.https://dx.doi.org/10.1038/s41598-022-12899-7.
  16. Kirschen G.W., AlAshqar A., Miyashita-Ishiwata M., Reschke L., El Sabeh M., Borahay M.A. Vascular biology of uterine fibroids: connecting fibroids and vascular disorders. Reproduction. 2021;162(2):R1-R18.https://dx.doi.org/10.1530/REP-21-0087.
  17. Chang H.Y., Koh V.C.Y., Md Nasir N.D., Ng C.C.Y., Guan P., Thike A.A. et al. MED12, TERT and RARA in fibroepithelial tumours of the breast. J. Clin. Pathol. 2020;73(1):51-6. https://dx.doi.org/10.1136/jclinpath-2019-206208.
  18. Heikkinen T., Äyräväinen A., Hänninen J., Ahvenainen T., Bützow R.,Pasanen A., Vahteristo P. MED12 mutations and fumarate hydratase inactivation in uterine adenomyomas. Hum. Reprod. Open. 2018;4:hoy020.https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoy020
  19. Ferrero H. HMGA2 involvement in uterine leiomyomas development through angiogenesis activation. Fertil. Steril. 2020;114(5):974-5.https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.07.044
  20. Li Y., Qiang W., Griffin B.B., Gao T., Chakravarti D., Bulun S. et al. HMGA2-mediated tumorigenesis through angiogenesis in leiomyoma. Fertil. Steril. 2020;114(5):1085-96. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.05.036
  21. Unachukwu U., Chada K., D’Armiento J. High Mobility Group AT-Hook 2 (HMGA2) oncogenicity in mesenchymal and epithelial neoplasia. Int. J. Mol. Sci. 2020;21:3151. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21093151.
  22. Galindo L.J., Hernández-Beeftink T., Salas A., Jung Y., Reyes R., de Oca F.M. et al. HMGA2 and MED12 alterations frequently co-occur in uterine leiomyomas. Gynecol. Oncol. 2018;150(3):562-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.ygyno.2018.07.007.
  23. Zyla R.E., Hodgson A.J. Gene of the month: FH. J. Clin. Pathol. 2021;74(10):615-9. https://dx.doi.org/10.1136/jclinpath-2021-207830.
  24. Schmidt C., Sciacovelli M., Frezza C. Fumarate hydratase in cancer: A multifaceted tumour suppressor. Semin. Cell Dev. Biol. 2020;98:15-25.https://dx.doi.org/10.1016/j.semcdb.2019.05.002.
  25. Gregová M., Hojný J., Němejcová K., Bártů M., Mára M., Boudová B. et al. Leiomyoma with bizarre nuclei: a study of 108 cases focusing on clinicopathological features, morphology, and fumarate hydratase alterations. Pathol. Oncol. Res. 2020;26(3):1527-37. https://dx.doi.org/10.1007/s12253-019-00739-5.
  26. Sciacovelli M., Gonçalves E., Johnson T.I., Zecchini V.R., da Costa A.S., Gaude E. et al. Fumarate is an epigenetic modifier that elicits epithelial-to-mesenchymal transition. Nature. 2016;537(7621):544-7.https://dx.doi.org/10.1038/nature19353.
  27. Punjabi L.S., Thomas A. The Waldo of fibroids under the microscope: fumarate hydratase-deficient leiomyomata. F. S. Rep. 2022;3(2):172-3.https://dx.doi.org/10.1016/j.xfre.2022.03.008.
  28. Garg K., Rabban J. Hereditary leiomyomatosis and renal cell carcinoma syndrome associated uterine smooth muscle tumors: bridging morphology and clinical screening. Genes. Chromosomes Cancer. 2021;60:210-6.https://dx.doi.org/10.1002/gcc.22905.
  29. Zhao Z., Wang W., You Y., Zhu L., Feng F. Novel FH mutation associated with multiple uterine leiomyomas in Chinese siblings. Mol. Genet. Genomic Med. 2020;8(1):e1068. https://dx.doi.org/10.1002/mgg3.1068.
  30. Пономаренко И.В., Полоников А.В., Чурносов М.И. Полиморфные локусы гена LHCGR, ассоциированные с развитием миомы матки. Акушерство и гинекология. 2018;10:86-91. [Ponomarenko I.V., Polonikov A.V., Churnosov M.I. Polymorphic LHCGR gene loci associated with the development of uterine fibroids. Obstetrics and Gynecology. 2018;(10):86-91. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.10.86-91.
  31. Ponomarenko I., Reshetnikov E., Polonikov A., Verzilina I., Sorokina I., Yermachenko A. et al. Candidate genes for age at menarche are associated with uterine leiomyoma Front. Genet. 2021;11:512940. https://dx.doi.org/10.3389/fgene.2020.512940.
  32. Liu S., Yin P., Xu J., Dotts A.J., Kujawa S.A., Coon V.J.S. et al. Targeting DNA methylation depletes uterine leiomyoma stem cell-enriched population by stimulating their differentiation. Endocrinology. 2020;161(10):bqaa143.https://dx.doi.org/10.1210/endocr/bqaa143
  33. Ali M., Esfandyari S., Al-Hendy A. Evolving role of microRNAs in uterine fibroid pathogenesis: filling the gap! Fertil. Steril. 2020;113(6):1167-8.https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.04.011
  34. Ciebiera M., Włodarczyk M., Zgliczyński S., Łoziński T., Walczak K., Czekierdowski A. The role of miRNA and related pathways in pathophysiology of uterine fibroids-from bench to bedside. Int. J. Mol. Sci. 2020;21(8):3016. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21083016.
  35. Peng X., Mo Y., Liu J., Liu H., Wang S. Identification and validation of miRNA-TF-mRNA regulatory networks in uterine fibroids. Front. Bioeng. Biotechnol. 2022;10:856745. https://dx.doi.org/10.3389/fbioe.2022.856745.
  36. Kim M., Kang D., Kwon M.Y., Lee H.J., Kim M.J. MicroRNAs as potential indicators of the development and progression of uterine leiomyoma. PloS One. (2022);17(5):e0268793. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0268793.
  37. Falahati Z., Mohseni-Dargah M., Mirfakhraie R. Emerging roles of long non-coding RNAs in uterine leiomyoma pathogenesis: a review. Reprod. Sci. 2022;29:1086-101. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-021-00571-w.
  38. Cao T., Jiang Y., Wang Z., Zhang N., Al-Hendy A., Mamillapalli R. et al. H19 LncRNA identified as a master regulator of genes that drive uterine leiomyomas. Oncogene. 2019;38:5356-66. https://dx.doi.org/10.1038/s41388-019-0808-4.
  39. Chuang T.D., Quintanilla D., Boos D., Khorram O. Long noncoding RNA MIAT modulates the extracellular matrix deposition in leiomyomas by sponging MiR-29 family. Endocrinology. 2021;162(11):bqab186. https://dx.doi.org/10.1210/endocr/bqab186.
  40. Zhou W., Wang G., Li B., Qu J., Zhang Y. LncRNA APTR promotes uterine leiomyoma cell proliferation by targeting ERα to activate the Wnt/β-Catenin pathway. Front. Oncol. 2021;11:536346. https://dx.doi.org/10.3389/fonc.2021.536346.
  41. Ulin M., Ali M., Chaudhry Z. T., Al-Hendy A., Yang Q. Uterine fibroids in menopause and perimenopause. Menopause. 2020;27(2):238-42.https://dx.doi.org/10.1097/GME.0000000000001438.
  42. Omar M., Laknaur A., Al-Hendy A., Yang Q. Myometrial progesterone hyper-responsiveness associated with increased risk of human uterine fibroids. BMC Womens Health. 2019;19(1):92. https://dx.doi.org/10.1186/s12905-019-0795-1
  43. Borahay M.A., Asoglu M.R., Mas A., Adam S., Kilic G.S., Al-Hendy A. Estrogen receptors and signaling in fibroids: role in pathobiology and therapeutic implications. Reprod. Sci. 2017;24:1235-44.https://dx.doi.org/10.1177/1933719116678686.
  44. Khan K.N., Fujishita A., Koshiba A., Ogawa K., Mori T., Ogi H. et al. Expression profiles of E/P receptors and fibrosis in GnRHa-treated and -untreated women with different uterine leiomyomas. PloS One. 2020;15(11):e0242246.https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0242246.
  45. Головченко И.О. Генетические детерминанты уровня половых гормонов у больных эндометриозом. Научные результаты биомедицинских исследований. 2023;9(1):5-21. [Golovchenko I.O. Genetic determinants of sex hormone levels in endometriosis patients. Research Results in Biomedicine. 2023;9(1):5-21. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18413/2658-6533-2023-9-1-0-1.
  46. Alsudairi H.N., Alrasheed A.T., Dvornyk V. Estrogens and uterine fibroids: an integrated view. Research Results in Biomedicine. 2021;7(2):156-63.https://dx.doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-2-0-6.
  47. Xing C., Zhang J., Zhao H., He B. Effect of sex hormone-binding globulin on polycystic ovary syndrome: mechanisms, manifestations, genetics, and treatment. Int. J. Womens Health. 2022;14:91-105. https://dx.doi.org/10.2147/IJWH.S344542.
  48. Balogh A., Karpati E., Schneider A.E., Hetey S., Szilagyi A., Juhasz K. et al. Sex hormone-binding globulin provides a novel entry pathway for estradiol and influences subsequent signaling in lymphocytes via membrane receptor. Sci. Rep. 2019;9(1):4. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-018-36882-3.
  49. Hammond G.L. Plasma steroid-binding proteins: primary gatekeepers of steroid hormone action. J. Endocrinol. 2016;230(1):R13-25.https://dx.doi.org/10.1530/JOE-16-0070.
  50. Soave I., Marci R. From obesity to uterine fibroids: an intricate network. Curr. Med. Res. Opin. 2018;34(11):1877-9. https://dx.doi.org/10.1080/03007995.2018.1505606
  51. Mozzachio K., Moore A.B., Kissling G.E., Dixon D. Immunoexpression of steroid hormone receptors and proliferation markers in uterine leiomyoma and normal myometrial tissues from the miniature pig, sus scrofa. Toxicol. Pathol. 2016;44:450-7. https://dx.doi.org/10.1177/0192623315621414
  52. Ali M., Al-Hendy A. Selective progesterone receptor modulators for fertility preservation in women with symptomatic uterine fibroids. Biol. Reprod. 2017;97(3):337-52. https://dx.doi.org/10.1093/biolre/iox094.
  53. Stewart E.A. Gonadotropins and the uterus: is there a gonad-independent pathway? J. Soc. Gynecol. Investig. 2001;8(6):319-26.
  54. Baird D.D., Kesner J.S., Dunson D.B. Luteinizing hormone in premenopausal women may stimulate uterine leiomyomata development. J. Soc. Gynecol. Investig. 2006;13(2):130-5. https://dx.doi.org/10.1016/j.jsgi.2005.12.001.
  55. DiMauro A., Seger C., Minor B., Amitrano A.M., Okeke I., Taya M. et al.Prolactin is expressed in uterine leiomyomas and promotes signaling and fibrosis in myometrial cells. Reprod. Sci. 2022;29(9):2525-35.https://dx.doi.org/10.1007/s43032-021-00741-w.
  56. Cetin E., Al-Hendy A., Ciebiera M. Non-hormonal mediators of uterine fibroid growth. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2020;32(5):361-70. https://dx.doi.org/ 10.1097/GCO.0000000000000650.
  57. Радзинский В.Е., Алтухова О.Б. Молекулярно-генетические детерминанты бесплодия при генитальном эндометриозе. Научные результаты биомедицинских исследований. 2018;4(3):28-37. [Radzinsky V.E., Altuchova O.B. Molecular-genetic determinants of infertility in genital endometryosis. Research Results in Biomedicine. 2018;4(3):28-37. (in Russian)].https://dx.doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-3-0-3.
  58. Ciebiera M., Włodarczyk M., Wrzosek M., Słabuszewska-Jóźwiak A., Nowicka G., Jakiel G. Ulipristal acetate decreases transforming growth factor β3 serum and tumor tissue concentrations in patients with uterine fibroids. Fertil. Steril. 2018;109(3):501-7.e2. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.11.023.
  59. Yang Q., Al-Hendy A. Update on the role and regulatory mechanism of extracellular matrix in the pathogenesis of uterine fibroids. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(6):5778. https://dx.doi.org/10.3390/ijms24065778.
  60. Ciebiera M., Włodarczyk M., Wrzosek M., Męczekalski B., Nowicka G., Łukaszuk K. et al. Role of transforming growth factor β in uterine fibroid biology. Int. J. Mol. Sci. 2017;18(11):2435. https://dx.doi.org/10.3390/ijms18112435.
  61. Ciebiera M., Włodarczyk M., Wrzosek M., Wojtyła C., Błażej M., Nowicka G. et al. TNF-α serum levels are elevated in women with clinically symptomatic uterine fibroids. Int. J. Immunopathol. Pharmacol. 2018;32:2058738418779461. https://dx.doi.org/10.1177/2058738418779461.
  62. Демакова Н.А. Молекулярно-генетические характеристики пациенток с гиперплазией и полипами эндометрия. Научные результаты био­медицинских исследований. 2018;4(2):26-39. [Demakova N.A. Molecular and genetic characteristics of patients with hyperplasia and endometric polyps. Research Results in Biomedicine. 2018;4(2):26-39. (in Russian)].https://dx.doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-2-0-4.
  63. Navarro A., Bariani M.V., Yang Q., Al-Hendy A. Understanding the impact of uterine fibroids on human endometrium function. Front. Cell Dev. Biol. 2021;25(9):633180. https://dx.doi.org/10.3389/fcell.2021.633180.
  64. Ciebiera M., Włodarczyk M., Zgliczyńska M., Łukaszuk K., Męczekalski B., Kobierzycki C. et al. The role of tumor necrosis factor α in the biology of uterine fibroids and the related symptoms. Int. J. Mol. Sci. 2018;19(12):3869.https://dx.doi.org/10.3390/ijms19123869.
  65. K V.K., Bhat R.G., Rao B.K., R A.P. The gut microbiota: a novel player in the pathogenesis of uterine fibroids. Reprod. Sci. 2023;30(12):3443-55.https://dx.doi.org/10.1007/s43032-023-01289-7.

Received 18.10.2023

Accepted 14.12.2023

About the Authors

Marina S. Ponomarenko, graduate student of the Department of Biomedical Disciplines, Belgorod State National Research University, +7(4722)30-13-83,
ponomarenkomc@yandex.ru, https://orcid.org/0009-0009-0312-0829, 308015, Russia, Belgorod, Pobedy str., 85.
Evgeny A. Reshetnikov, Dr. Bio. Sci., Professor of the Department of Medical and Biological Disciplines, Belgorod State National Research University, +7(4722)30-13-83, reshetnikov@bsu.edu.ru, https://orcid.org/0000-0002-5429-6666, 308015, Russia, Belgorod, Pobedy str., 85.
Irina V. Ponomarenko, Dr. Med. Sci., Professor of the Department of Medical and Biological Disciplines, Belgorod State National Research University, +7(4722)30-13-83, ponomarenko_i@bsu.edu.ru, https://orcid.org/0000-0002-5652-0166, 308015, Russia, Belgorod, Pobedy str., 85.
Mikhail I. Churnosov, Dr. Med. Sci., Head of the Department of Medical and Biological Disciplines, Belgorod State National Research University, +7(4722)30-13-83, churnosov@bsu.edu.ru, https://orcid.org/0000-0003-1254-6134, 308015, Russia, Belgorod, Pobedy str., 85.
Corresponding author: Irina V. Ponomarenko, ponomarenko_i@bsu.edu.ru

Similar Articles